Влияние субклинического и клинического мастита на процесс молокоотдачи коров ярославской породы

Проанализировали процесс доения здоровых коров и с заболеванием мастита по таким параметрам, как средний разовый удой, скорость молокоотдачи, длительность доения, для оценки различий между ними и необходимости использовать отличные от стандартных методы доения. (Цель исследования) Изучить влияние мастита на молокоотдачу коров и разработать рекомендации по доению заболевших животных. (Материалы и методы) Сформировали три группы животных по результатам теста на мастит: первая – здоровые, вторая – с субклиническим маститом, третья – с клинической формой заболевания. Провели контрольные дойки для сбора данных. Результаты скорости молокоотдачи фиксировали каждые 15 секунд доения. (Результаты и обсуждение) Выявили значительные различия между группами в скорости молокоотдачи (1,90; 0,89 и 0,49 килограмма в минуту соответственно) и продолжительности доения (281; 375 и 294 секунды). (Выводы) Определили, что в случае субклинического мастита доение наиболее продолжительное (в среднем 375 секунд). Отметили смещение пика скорости молокоотдачи со второй минуты доения на третью по сравнению со здоровыми животными. Выявили, что в случае клинического мастита длительность доения (295 секунд) меньше, чем при субклиническом, но при этом практически отсутствует пик скорости молокоотдачи. Подтвердили необходимость смещать режим интенсивного доения животного с субклиническим маститом на 30-45 секунд, а также использовать щадящий режим доения для коров с клиническим маститом.

1. Burmistrov D.E., Pavkin D.Y., Khakimov A.R., Ignatenko D.N., Nikitin E.A., Lednev V.N., Lobachevsky Y.P., Gudkov S.V., Zvyagin A.V. Application of Optical Quality Control Technologies in the Dairy Industry: An Overview. Photonics. 2021. 8. 551.

2. Кирсанов В.В., Павкин Д.Ю., Рузин С.С., Тарасова Е.И. Контроль и управление при почетвертном машинном доении коров // Агроинженерия. 2020. N4(98). С. 15-20.

3. Visioli F., Strata A. Milk, Dairy Products, and Their Functional Effects in Humans: A Narrative Review of Recent Evidence. Advances Nutrition. 2014. 5. 131-143.

4. Aernouts B., Polshin E., Lammertyn J., Saeys W. Visible and near-infrared spectroscopic analysis of raw milk for cow health monitoring: Reflectance or transmittance? Journal of Dairy Science. 2011. 94. 5315-5329.

5. Evangelista C., Basiricò L., Bernabucci U. An Overview on the Use of Near Infrared Spectroscopy (NIRS) on Farms for the Management of Dairy Cows. Agriculture. 2021. 11. 296.

6. Jamali H., Barkema H.W., Jacques M., Levallée-Bourget E., Malouin F., Saini V., Stryhn H., Dufour S. Invited review: Incidence, risk factors, and effects on clinical mastitis reccurence in dairy cows. Journal of Dairy Science. 2018. 101. 4729-4746.

7. Stevens M., Piepers S., De Vliegher S. Mastitis prevention and control practices and mastitis treatment strategies associated with the consumption of (critically important) antimicrobials on dairy herds in Flanders, Belgium. Journal of Dairy Science. 2016. 99. 2896-2903.

8. Hovinen M., Siivonen J., Taponen S., Hanninen, L. Detection of Clinical Mastitis with the Help of a Thermal Camera. Journal of Dairy Science. 2008. 91. 12. 4592-4598.

9. Bezman D., Lembierskiy-Kuzin L., Katz G., Merin U., Leitner G. Influence of intramammary infection of a single gland in dairy cows on the cow’s milk quality. Journal of Dairy Research. 2015. 82. 304-311.

10. Sánchez-Macías D., Morales-delaNuez A., Torres A., Hernández-Castellano L.E., Jiménez-Flores R., Cstro N., Argüello A., Effects of somatic cells to carpine milk on cheese quality. International Dairy Journal. 2013. 29. 61-67.

11. Sánchez-Macías D., Hernández-Castellano L.E., Morales-delaNuez A., Herra-Chávez B., Argüello A., Castro N. Somatic cells: A potential tool to accelerate low-fat goat cheese ripening. International Dairy Journal. 2020. 102.

12. Halasa T., Huijps K., Østerås O., Hogeveen H. Economic effects of bovine mastitis management: A review. Veterinary Quarterly. 2007. 29. 18-31.

13. Воробьева С.С. Количество соматических клеток в молоке ярославских чистопородных коров в зависимости от удоя молока и скорости молокоотдачи // Аграрный вестник Верхневолжья. 2019. N3(28). С. 78-82.

14. Ruegg P. 100-Year Review: Mastitis detection, management, and prevention. Journal of Dairy Science. 2017. 100. 10381-10397.

15. Kul E., şahin A., Atasever S. The effects of somatic cell count on milk yield and milk composition in Holstein cows. Veterinarski arhiv. 2019. 89. 143-154.

16. Seegers H. Fourichon C. Beaudeau F. Review article: Production effects related to mastitis and mastitis economics in dairy cattle herds. Veterinary Research. 2003. 34. 475-491.

17. . Sipka A.A., Gurjar A., Klaessig S., Duhamel G.E., Skidmore A., Swinkels J., Cox P., Schukken Y. Prednisolone and cefapirin act synergistically in resolving experimental Escherichia coli mastitis. Journal of Dairy Science. 2013. 95. 4406-4418.

18. Wall S.K., Hernández-Castellano E., Ahmadpour A., Bruckmaier R.M., Wellnitz O. Differential glucocorticoid-induced closure of the blood-milk barrier during lipopolysaccharideand lipoteichoic acid-induced mastitis in dairy cows. Journal of Dairy Science. 2016. 99. 7544-7553.